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      植物组织培养有两个核心的步骤，那就是野生材料驯化和组织形态建成。

      野生材料的驯化

      很多时候，需要使用植物组织培养往往是出于遗传转化受体的需要，抑或是进行不同条件的培养以提取代谢物进行差异分析，出于这样的前提，实验者往往只是搬照文献里给出的培养条件或者做出明确的改动，缺乏的只是材料。

      因此，无菌培养是这一类组织培养实验的保障，而将野生材料驯化的过程，即是无菌操作与外植体消毒等一系列与污染作斗争的集中体现。

      野生材料驯化的具体措施如下：

      1. 灭菌：

      通常，我们需要对使用的培养基、培养皿、镊子、、去离子水和滤纸进行*的灭菌，这样可以*杀死器材和培养基中的微生物；

      其中，培养基、镊子、、去离子水等液体和金属器皿通常采用121℃ 20-30min的湿热灭菌法，玻璃器皿常用180℃ 2h的干热灭菌法，而抗生素、激素等不耐高温的试剂常用过滤灭菌法。

      2. 消毒：

      消毒是指外植体和操作台面的消毒，目的是在不伤害植物的前提下，抑制和杀死大部分微生物。其中，外植体消毒的方式主要分为表面消毒和侵入消毒两种，对于操作台面的消毒通常是指超净工作台使用前进行的的30min紫外灯消毒和操作过程中的空气滤过消毒，值得一提的是，在使用超净台之前用70 % 酒精擦拭台面会有一定效果。

      对于大部分种子、陆生植物的茎叶等，表面消毒足以杀死可能会在组织培养过程中导致污染的微生物，比如70 % 乙醇、5 % 过氧化氢，均可以在短时间内有效杀死表面的微生物；

      但对于一些生长在潮湿阴暗环境中的植物来说，通常有着大量的组织内生菌，而这些内生菌往往不是表面消毒可以杀死的，一些侵入式消毒剂会比较有效，如HgCl2、次氯酸钠等。

      3. 无菌操作：

      无菌操作即杜绝一切来自操作者的污染或因操作者失误导致的其他污染，一些常见的操作手法如下：

a) 设立单独的组培间，并设立与外界污染区的缓冲间，在缓冲间内更衣进入组培间；

b) 进入组培间前要在缓冲间内进行全身的酒精喷雾消毒，同时换上组培室拖鞋；

c) 操作过程中，佩戴手套或肢体不从一切开口器皿的上方经过；

d) 器皿不要遮盖超净台出风口，超净台不要开口太大；

e) 在超净台中点燃酒精灯，操作尽量在酒精灯火焰周围进行；

f) 使用的金属工具和玻璃器皿每进行一阶段的操作后及时进行灼烧灭菌；

g) 镊子、枪头等接触培养基的工具在接触到其他固态表面后立即灼烧灭菌或更换；

h) 做其他分子实验的超净台应与进行组织培养接种的超净台分开；

      4. 富内生菌类型的野生材料的驯化

      部分野生材料难以实现有效的消毒，即便是两种消毒方法复合使用也收效甚微，此时应使用试管苗培养的方法，大批量接种培养，经过两周后筛选未污染的植株再进行扩大培养，此方法可有效驯化野生植株获得无菌系，一些苔藓植物常用这样的方法。注意，在培养过程中一旦发生污染，整个培养基的植株都应该丢弃。

      如果与内生菌的斗争过于艰难，可以尝试使用组织培养抗菌剂PPM，这是一种广谱的抗菌剂，但是也会对某些植物有着抑制效果，建议在驯化获得无菌系之后停止使用。

      组织形态建成

      在一些其他的时候，我们需要对一些从未进行过组织培养的植物进行人工的繁育，以适应实验的需求，在这个时候，我们往往需要自己进行组织形态建成的探究。

      正确的改变培养条件，是建成想要的组织形态的一种策略。

      首先要说明的是，在更换培养基的时候，需*清除残余的培养基并将植株剪切或者其他方式进行处理后移到新的培养基上，否则残余的培养基将影响植株的状态。

      其次，有哪些培养条件可以通过设备进行人为的改变呢？

1. 光照的强度、光质与光照时间；
2. 培养基的无机成分、有机成分，尤其是生长调节剂；
3. 培养基的PH值；
4. 培养基的一些添加剂；
5. 人工气候箱培养的温度、湿度、培养瓶通气性等；

      下面，我们对这些条件进行逐条的解析：

• 光照对植物组织的影响：

      当发生以下问题时，需要考虑光照因素：

      诱导营养生长与生殖生长——光质、光周期，远红光通常可诱导生殖生长；

      组织褐变率高——光强过强、光照时间过长；

      叶片黄化或生长速度慢——光照不足；

• 培养基成分的影响：

      植物组织培养的培养基通常需要考虑添加以下成分：

1. 无机盐成分——其中，氨态氮、硝态氮的比例和组织的脱分化与再分化有关，Fe、Mg与叶绿素生成有关、Ca与愈伤组织生长有关，还有很多针对不同植物特殊需求而添加的元素，等等；
2. 琼脂等固相支持物——与培养基的凝固能力有关，通常添加0.8 % - 1.2 %的琼脂即可满足实验需要；
3. 蔗糖、葡萄糖等碳源——与组织的生长速度有关，通常不会影响组织的形态，一般添加0.5 % - 4 %，通常2 % 的蔗糖可供组织吸收一个月；
4. 维生素、、肌醇等其他有机成分——可促进胚状体的形成，协助组织进行各项代谢；
5. 培养基PH的影响：

      培养基PH不适宜可能导致组织褐变和玻璃化，但不同植物对PH的敏感性不同，如苔藓植物对培养基PH的敏感性较低，而一些单子叶植物则对培养基PH十分敏感。

• 活性炭、椰奶等添加剂：

      活性炭可吸收受伤的植物组织产生的酚类，同时保护易降解的植物激素，在容易发生褐变与玻璃化的组织培养驯化过程中，可以尝试在培养基中加入活性炭，一般1 g/L。

      椰奶、洋葱、土豆泥、香蕉泥、胡萝卜汁等添加成分，其化学成分不*清楚，但往往具有着一定的调节作用，诸如香蕉泥可以稳定PH有利于壮苗、土豆泥可以补充维生素有利于生根等。

• 培养箱的一些环境参数：

      培养箱的环境尤其温度会对植物培养造成一定的影响，一般植物组织培养可使用人工气候培养箱在23 – 27 ℃的温度区间。在一定范围内，湿度、通气性等条件通常不会对组织造成关键性的影响。

• 特别地，植物生长调节剂在组织培养中的关键作用：

      植物生长调节剂可分为生长素类、细胞分裂素类、赤霉素、特殊调节剂类四种。

      生长素类通常可以诱导植物组织生根、生芽，与细胞分裂素类搭配可以使高等植物向生芽、生根和保持愈伤组织状态生长，而低等的苔藓植物没有根茎叶的明显分化，其形态建成较为复杂。通常，IBA与NAA、IAA造成的效果相似但相对更强，2，4-D造成的效果与另外三种生长素有着显著不同。细胞分裂素可显著提高愈伤组织的生长速度，但对低等植物效果不明显。

      特殊调节剂，如酚噻隆、PSK等，具有着强烈的调节效果但机理尚不明确，可在培养基中尝试添加。

      植物生长调节剂是MAX重要的组织形态建成的方式，在植物组织培养中添加不同的激素不仅可以改变植物生长的特性，还可能改变植物的次生代谢特征，因此研究激素对某种或某类植物的影响是一项有意义的科研问题。